T/NAASS 016-2022
Правила трансплантации эмбрионов высокопродуктивных молочных коров в Нинся (Англоязычная версия)

Стандартный №

T/NAASS 016-2022

язык

Китайский, Доступно на английском

Дата публикации

2022

Разместил

Group Standards of the People's Republic of China

Последняя версия

T/NAASS 016-2022

сфера применения

Термины и определения К данному документу применяются следующие термины и определения. 3.1 Трансплантация эмбрионов. Трансплантация эмбрионов. Выберите корову-реципиента, физиологическое состояние которой аналогично состоянию коровы-донора, и используйте нехирургический метод для трансплантации эмбриона в рог матки коровы-реципиента, чтобы эмбрион мог продолжать развиваться. . 4 Отбор и управление кормлением крупного рогатого скота-донора 4.1 Отбор крупного рогатого скота-донора 4.1.1 Крупный рогатый скот-донор должен соответствовать стандарту коров голштинской породы в GB/T 3157, с полными родословными, линейным показателем формы тела выше хорошего, крепкого телосложения, без генетических дефектов. 4.1.2 Когда взрослые коровы используются в качестве коров-доноров, следует отбирать коров с отличными производственными показателями, которые участвуют в тесте продуктивности молочных коров (DHI), или коров с племенной ценностью после генетической оценки (EBV). 4.1.3 Когда молодые коровы используются в качестве крупного рогатого скота-донора, следует выбирать крупный рогатый скот, имеющий племенную ценность на основе полногеномного тестирования (GEBV) или чьи родители имеют отличные производственные показатели. 4.2 Кормление и уход за донорским скотом 4.2.1 Условия кормления донорского скота должны быть комфортными и стабильными, чтобы избежать стрессовых реакций, таких как различные условия окружающей среды и вакцинации. 4.2.2 Обеспечить научное, разумное и сбалансированное диетическое питание. Стандарты кормления реализуются в соответствии с NY/T 34, а требования к управлению реализуются в соответствии с NY/T 1445. 4.2.3 За месяц до суперовуляции, в зависимости от состояния организма коровы-донора, следует добавить соответствующее количество концентрата, а также комплексные витамины и микроэлементы в соответствующем количестве. Во время суперовуляции масса тела должна находиться в пределах состояние набора веса. 5 Отбор замороженной спермы 5.1 Отберите замороженную сперму проверенных племенных быков с чистой родословной, стабильными генетическими признаками и отличными производственными показателями для сопоставления с донорским скотом. Требования к выбору и сопоставлению семян должны выполняться в соответствии с положениями DB64/T 1787. 5.2 Качество обычной замороженной спермы соответствует нормам GB 4143, а качество замороженной спермы с разделением по полу соответствует нормам GB/T 31582. 6. Суперовуляция крупного рогатого скота-донора 6.1. Подходящим временем года является весна и осень; следует избегать, насколько это возможно, жаркого лета и холодных сезонов. 6.2 Выбор гормонов Название, тип, доза инъекции и функция репродуктивных гормонов, выбранных для суперовуляции, указаны в Приложении А. 6.3 План суперовуляции 6.3.1 Не учитывайте время течки у коровы-донора и избегайте периода течки. Примените метод CIDR+FSH+PGF2α для проведения лечения суперовуляции. Для доставки CIDR в шейку матки коровы-донора используется специальный пистолет CIDR. 6.3.2 День установки CIDR считается за 0 дней.Начиная с 7д по 9д,ФСГ вводят внутримышечно методом непрерывной нисходящей инъекции.ФСГ вводят 1 раз утром и 1 раз в 12ч. вечером, непрерывно.Инъекции 4 дня. 6.3.3 Введите PGF2α одновременно во время 5-й и 6-й инъекции ФСГ. 6.3.4 После шестой инъекции ФСГ извлеките CIDR, растворите 3,2 млн МЕ пенициллина и 1 миллион МЕ стрептомицина в физиологическом растворе, смешайте с 50 мл физиологического раствора и промойте влагалище коровы-донора. См. приложение B.1 для получения информации о конкретных методах работы. 7 Искусственное осеменение крупного рогатого скота-донора 7.1 Выявление течки у крупного рогатого скота-донора После 8-й инъекции ФСГ наблюдают течку каждые 4 часа, каждый раз продолжительностью более 0,5 часа. В качестве критерия течки используется стандарт коровы-донора, которая должна стоять на месте и принимать других коров, взбирающихся на нее, и записи о течке должны вестись. 7.2 Традиционное искусственное осеменение крупного рогатого скота-донора замороженной спермой 7.2.1 Первое искусственное осеменение крупного рогатого скота-донора проводят через 12 часов после наступления течки и одновременно с этим внутримышечно вводят 0,05 мг ЛГРГ-А3, второе искусственное осеменение проводят 12 разница в часах. . 7.2.2 После второго искусственного осеменения проверяют яичник коровы-донора через прямую кишку.Если остается большое количество невыделившихся фолликулов, внутримышечно вводят 0,05 мг ЛГРГ-А3 и проводят третье искусственное осеменение. с интервалом 12 часов. 7.2.3 При первых двух искусственных осеменениях каждый раз будут использоваться два тюбика замороженной спермы, а при третьем искусственном осеменении – один тюбик замороженной спермы. 7.2.4. Искусственное осеменение должно быть проведено в матку коровы-донора. Конкретный метод работы должен выполняться в соответствии с положениями NY/T 1335. 7.3 Искусственное осеменение замороженной спермой донорского скота с контролируемым полом 7.3.1 Интервал размножения составляет 8–10 часов, при этом для каждого искусственного осеменения используются 2 пробирки с замороженной спермой с контролируемым полом. Другие рабочие процедуры такие же, как и при обычном искусственном осеменении замороженной спермой. 7.3.2 Искусственное оплодотворение следует проводить по большой кривизне левого и правого рогов матки. Конкретный метод работы должен выполняться в соответствии с правилами NY/T 3646. 8. Сбор и извлечение эмбрионов 8.1. Подготовка 8.1.1. На 6-й день после наступления течки у коровы-донора лабораторию по обнаружению эмбрионов следует заранее очистить и продезинфицировать. Солнечный лучик. 8.1.2 Заранее подготовьте оборудование и расходные материалы для реагентов, используемые для сбора и извлечения эмбрионов, а также тщательно проведите очистку, дезинфекцию и стерилизацию. Требования см. в Приложении C и Приложении D. Конкретный метод работы должен выполняться в соответствии с правилами NY/T 1445. 8.2 Эмбрионы собирают на 6-7 день после того, как у коровы-донора наступает течка, и эмбрионы извлекают нехирургическими методами. Конкретный метод работы должен осуществляться в соответствии с правилами NY/T 1445. 8.3. Осмотр эмбрионов. Извлеченная жидкость для промывки яиц быстро отправляется в помещение для осмотра эмбрионов, где осмотр эмбрионов проводится с помощью стереомикроскопа. Конкретный метод работы должен осуществляться в соответствии с правилами NY/T 1445. 8.4 Идентификация эмбрионов Идентифицируйте, классифицируйте и промывайте обнаруженные эмбрионы. Конкретный метод работы должен осуществляться в соответствии с правилами NY/T 1445. 8.5 Сохранение эмбрионов. После идентификации имеющиеся эмбрионы следует как можно скорее трансплантировать или криоконсервировать. Конкретный метод работы должен осуществляться в соответствии с правилами NY/T 1445. 8.6 Вести учет суперовуляции, искусственного осеменения, извлечения и обработки эмбрионов, а также статистику производства эмбрионов для каждой партии крупного рогатого скота-донора (см. Приложение Е и Приложение F). 9 Трансплантация эмбрионов 9.1 Отбор, кормление и содержание крупного рогатого скота-реципиента 9.1.1 Выбор крупного рогатого скота-реципиента Скот-реципиент должен быть крупным, здоровым и с нормальной репродуктивной функцией, молодняком голштинской породы или помесными улучшенными мясными коровами в качестве реципиентов, которые дважды пережили бесплодие. путем искусственного оплодотворения не допускаются в число реципиентов. 9.1.2 Кормление и содержание крупного рогатого скота-реципиента 9.1.2.1 Условия кормления крупного рогатого скота-реципиента должны быть реализованы в соответствии с 4.2.1. 9.1.2.2 Должно быть гарантировано научное и сбалансированное диетическое питание крупного рогатого скота-реципиента, а стандарты кормления должны соблюдаться в соответствии с NY/T 34 и NY/T 815. 9.1.2.3 Реципиенты должны начать прикорм за 1 месяц до трансплантации, дополнить их необходимым количеством микроэлементов и поливитаминов, а их масса тела должна находиться в состоянии прибавки веса во время трансплантации. Стандарты разведения реализуются в соответствии с NY/T 34 и NY/T 815. 9.2 Лечение течки у коров-реципиентов 9.2.1 Коровы-реципиенты в естественной течке с хорошим желтым телом в естественной течке и разницей не более ±24 часов до и после течки с коровой-донором должны использоваться в качестве квалифицированных реципиентов для трансплантации эмбрионов . 9.2.2 Одновременная течка 9.2.2.1 Для реципиентов, находящихся на 7–15-м дне эстрального цикла и имеющих хорошее желтое тело при ректальном исследовании, для лечения синхронной течки можно использовать однократную инъекцию PGF2α. Время обработки совпадает с донорским скотом. 9.2.2.2 Без учета цикла эструса рекомендуется использовать 2 инъекции PGF2α или CIDR+PGF2α для лечения реципиентов с синхронизацией эструса. Время обработки совпадает с донорским скотом. 9.2.3 Наблюдение за эструсом: У крупного рогатого скота-реципиента, получавшего течку в одно и то же время, течка начнет наблюдаться вместе с группой через 24 часа после инъекции PGF2α. Точный критерий эструса - устойчиво стоять и принимать других коров, взбирающихся на них. течка продлится до 96 часов после удаления тромба h. Ведите записи наблюдения за течкой. 9.3 Исследование желтого тела 9.3.1 На 6-й день течки у коровы-реципиента ощупывают матку и яичники через прямую кишку, проверяют развитие желтого тела на яичнике, определяют наличие функционального желтого тела на овулирующем. сторона. 9.3.2 Корова-реципиент, подлежащая трансплантации, должна иметь следующие характеристики: матка хорошо развита, нормальной формы и консистенции, желтое тело диаметром более 1 см с выраженными выпячиваниями, консистенция слегка твердая и эластичная. 9.3.3 При проведении ректальной пальпации для исследования яичника и желтого тела реципиента действие должно быть осторожным, чтобы избежать чрезмерной стимуляции желтого тела и яичника. 9.4 Трансплантация 9.4.1 Свежие эмбрионы, собранные от коровы-донора, могут быть непосредственно трансплантированы корове-реципиенту, у которой время течки составляет ±24 часа от коровы-донора, а желтое тело проверяют путем ректальной пальпации. 9.4.2 При трансплантации криоконсервированных эмбрионов их следует разморозить и определить качество эмбрионов.Трансплантацию эмбрионов следует проводить на 6-7-й день течки у коровы-реципиента. См. Приложение G для получения информации об инструментах, оборудовании и расходных материалах для реагентов, используемых для трансплантации. Конкретная операция должна выполняться в соответствии с положениями NY/T 1445. 9.5 Осмотр стельности 9.5.1 После переноса эмбрионов следует уделить внимание наблюдению за возвращением крупного рогатого скота-реципиента в первый и второй эстральные периоды. 9.5.2 В период с 28 по 60 день после трансплантации невозвращающийся крупный рогатый скот должен быть проверен на стельность с помощью В-УЗИ или ректальной пальпации, и должны быть сделаны записи. 9.5.3 Повторное ректальное пальпаторное исследование следует провести через 90–120 дней после трансплантации. Во время теста на беременность движения должны быть осторожными, чтобы избежать выкидыша. 9.5.4 После того, как крупный рогатый скот-реципиент наступил стельности, необходимо усилить организацию кормления, питание должно быть комплексным, и их следует выращивать в группах с другим скотом, чтобы избежать абортов, вызванных драками, преследованием и поркой. 9.6 Записи Ведите тщательные записи наблюдения за течкой, осмотра лютеиновой фазы, переноса эмбрионов и осмотра стельности скота-реципиента. Требования и методы регистрации приведены в Приложении H.

T/NAASS 016-2022 История

• 2022 T/NAASS 016-2022 Правила трансплантации эмбрионов высокопродуктивных молочных коров в Нинся